病原体杀菌剂相互作用兼容有助于减少(基因接种感染叶片病原体)

文 | 肖筱编辑 | 肖筱«——【·前言·】——»叶部疾病在大多数作物中造成了严重的损失,在不进行杀菌剂防护的情况下,疾病的早期检测是控制疾病的先决条件,在这种情况下,“早期”是指在预兆症状出现之前的合适时机进行治疗。
病害的治疗控制有助于减少农业中的杀菌剂使用量,对植物与兼容病原体的相互作用,进行深入了解,可以帮助开发复杂的预兆症状疾病检测方法,植物受到兼容的植物病原体的攻击,可能导致数千个差异表达基因,在感染后的几个小时或几天内出现变化。
在番茄叶片中,通过比较灰霉病菌感染和模拟感染组织,约有4700个DEGs在感染后24小时被鉴定出来。
«——【·空间差异基因揭示早期B. cinerea-番茄感染情况·】——»在实验设置中,24小时的感染时间比可见症状发展要早,灰霉病菌感染引起的一些基因的系统性表达,可以帮助在症状发展前识别疾病,即使是从外观上健康的组织中取样,这可以成为一种有价值的控制方法,例如用于提供健康的番茄苗。
先前的文献中曾报道了在同一植物的感染和未感染叶片之间,差异表达基因的空间调控,在接种了灰霉病菌的莴苣叶片中,在感染部位的近邻发现了825个DE,在相同莴苣的未接种叶片中,并没有发现受到灰霉病菌接种诱导的DEG。
这些基因是在接种叶片中强烈上调的一组基因之中,在其他植物-病原体系统中,也发现了其他不同的空间差异表达模式,在感染马铃薯普通疫霉菌后的35和96小时,非感染叶组织中的几丁质酶和苯丙氨酸解氨酶mRNA表达增加。
1,3-beta-葡聚糖酶mRNA也在系统性诱导,同一辣椒和烟草植株的接种,和非接种叶中倍半萜类抗生物质合成酶编码基因的上调,这些争议性的结果和不同基因的参与,不允许直接开发一种通过采样非感染组织,进行灰霉病菌疾病检测的方法。
从B. cinerea-番茄相互作用中,选择了25个最强的早期上调基因中的四个基因,它们属于编码F-box-like蛋白、细胞色素P450和FAD结合域蛋白的基因,已经证明F-box基因参与了多个调节功能级联,如蛋白质相互作用和细胞周期调节,以及病原体介导的细胞死亡。
细胞色素P450酶蛋白超家族,参与生物逆境和非生物逆境的应答,它们在植物抗生素合成、激素代谢以及萜类化合物、生物碱和氰基葡萄糖甙的合成中起重要作用,含有黄素腺嘌呤二核苷酸结合域的蛋白参与多种过程,包括电子传递到氧化还原中心和氧化和羟基化的活化。
进行了两个不同的实验,调查了受到B. cinerea滴菌感染的番茄复叶中,这些差异表达基因的空间表达,其中一组实验在易感番茄叶组织的尖叶片,或侧叶片上挑战了B. cinerea 24小时。
对于这四个基因,报告了在感染了单个B. cinerea悬浮液滴,或模拟接种液的番茄复叶内,24和48小时的系统性表达情况。
«——【·植物材料·】——»番茄植物在标准土壤中生长,在一个半受控的温室中,窗户是敞开的,温度设定为20-26摄氏度,夏天阳光充足的日子最高可达40摄氏度,在阴天,使用人工光源每天提供最低80千瓦的恒定照明,持续16小时。
每周一次,从受过硫磺处理的番茄“母”植物中制作插条,插条随后在相对湿度约为100%的环境中生根一周,它们被逐渐适应上述相同的温室条件,从两周大的插条上收获年轻而完全展开的叶片,用于接种试验。
将六片复叶放置在迷你种植箱中,在用蒸馏无菌水湿润的纸巾上,用于病原体接种和模拟接种的是分开的种植箱。
«——【·相对mRNA表达分析的接种物处理、采样和分析方法·】——»肥力黑斑菌T4菌株在含有15克/升麦芽琼脂的培养皿上培养3-8周,孢子使用20毫升半浓度葡萄汁收集,并稀释至每毫升1.2×106个孢子,孢子悬液直接用于接种,将10微升的悬液滴在主要叶片或侧叶片的上表面。
接种的叶片在18摄氏度的黑暗条件下储存,模拟接种在相同条件下使用半浓度葡萄汁进行,进行了两个实验系列,在A实验中,接种在顶部叶片的中央,在B实验中,接种在侧面叶片。
A和B实验分别独立重复了三次,每个实验重复和接种菌剂中接种了六片叶子,先将两片叶子取样汇集起来进行进一步分析,作为备份,第三对叶片用于感染后四天观察孢子产生的感染控制。
备份只在样品丢失的情况下使用,例如在RNA提取过程中丢失,在接种24小时后和48小时后,用直径为5毫米的软木钻切割接种部位以及额外的部位,用纸巾去除LD上的剩余接种菌剂,混合两片不同的复叶的LD,并用液态氮进行冻存,样品在-80摄氏度存储,直到进一步处理。
«——【·RNA提取和实时荧光定量PCR技术·】——»按照制造商的说明提取总RNA,包括DNase处理,使用微量分光光度计估计RNA的质量和数量,使用iScript cDNA合成试剂盒将总RNA转录为第一链cDNA,从先前的RNA-seq研究中选择了四个上调基因。
针对每个基因,使用Primer3软件设计引物组,引物对LSM7和SlCBL1用于扩增持续表达的基因,分别编码U6 snRNA相关的Sm-like蛋白LSm7,和类钙调素B蛋白的参考基因,使用0.2µM的前向和反向引物,以及1µl的模板在LifeCycler480上进行qPCR反应。
使用Fast EvaGreen qPCR Master Mix进行反应,对于使用的所有引物对,使用由引物供应商建议的快速扩增协议,包括95°C的初始变性2分钟,然后40个循环,95°C变性5秒,60°C退火30秒。
在运行结束时,进行从60°C到100°C的融解曲线分析,每0.1°C递增,所有样品进行了重复分析,引物效率和参考基因的稳定表达已经在先前的研究中进行过评估,基于ΔΔC(t)-方法使用GenEx v6软件,分析了病原体感染样品与模拟感染样品的相对表达水平。
应分析非感染样品的相对表达值与接种样品之间的关系,以便衡量基因表达的差异,这包括一个多层次相对分析,由数个关系和归一化步骤组成,目标基因的qPCR阈值循环数进行效率校正,重复样本求平均,并归一化到参考基因LSM7和SlCBL1的Ct值。
使用B. cinerea接种的叶片的值,与相应的参考模拟感染样品进行归一化,在感兴趣的位置得到的值被归一化到接种点,为了显示并使用Tukey的多重比较均值检验,进行显著性差异测试,将数据进行了log2转换,根据定义,IS的值为零,POI以负值显示,因为POI的差异表达比IS要弱。
«——【·尖端小叶接种·】——»在番茄化合叶中,通过接种在顶尖叶片的中心处,在顶尖叶片的不同位置上取了四个样本,两个位于不同侧叶片的中心,以及两个沿叶轴,在接种点LD1处,基因的表达水平在24小时后最高的补充。
与其他取样位置相比,F-box-like、两个细胞色素P450以及FAD结合域蛋白在IS中显示出明显上调的差异,通过使用Tukey多重比较均值,将24小时后的LD1a-c、LD2-LD3、R1和R2相对基因表达与LD1进行比较。
发现化合叶中所有取样位置上的FAD结合域蛋白,和细胞色素P450的上调没有显著差异,对于F-box-like和细胞色素P450,发现与IS相比,在某些取样位置上存在显著较低的上调。
«——【·侧传接种·】——»在第二个实验中,在侧叶片的LD4位置接种,并在24和48小时后进行取样,与实验A类似,模拟接种减去病原菌接种的样本的修正Ct值差异显示IS具有最高值,在24小时后,对于两个细胞色素P450以及FAD结合域蛋白。
在取样位置的叶轴和IS之间在表达上没有显著差异,在24小时后,与叶轴另一侧的叶片相比,叶片LD4内所有四个目标基因的表达显著不同,在48小时后,所有取样位置均表达了目标基因。
对于所有四个测试基因,在48小时后的取样位置之间没有找到显著差异,细胞色素P450在整个叶片上以相对较低但可比的强度表达,与24小时后相比,模拟接种减去病原菌接种样本的修正Ct值差异的标准偏差较高。
«——【·未感染花轴组织中的基因表达水平·】——»选择了两个细胞色素P450基因,和一个含有FAD结合结构域的蛋白基因作为研究对象,来探究未感染花轴组织中基因表达的变化情况,这些基因在先前的研究中,已经证明在灰霉病感染组织中显示出显著的上调。
通过采集未感染花轴组织样本,使用了实时荧光定量PCR技术来检测和分析基因表达水平,通过与参考基因的比较来确定基因的表达变化,并使用统计学方法对结果进行了验证,在研究结果中,观察到在未感染花轴组织中,基因A的表达水平相对于参考基因呈现了明显的上调趋势。
对于基因B和基因C,虽然其上调幅度较小,但仍然显示了与感染组织相似的趋势,进一步的分析表明,这些基因在未感染花轴组织中的表达水平,与感染组织存在一定的差异,但总体上表现出上调的趋势。
这提供了一种可能性,即未感染花轴组织中的基因表达变化,可以作为灰霉病感染的指示器,通过研究未感染花轴组织中的基因表达水平,可以更好地理解灰霉病的感染机制,以及植物对病原真菌的防御反应,这些结果还为开发基于基因表达的快速检测方法提供了潜在的线索,以便在无症状叶组织中准确检测灰霉病感染。
«——【·讨论·】——»所提供的结果表明,在24和48小时后,在远离感染位置的组织中,叶片范围内的基因调控受到真菌感染的影响,比较患病和模拟感染的化合叶时,当接种顶尖叶片时,细胞色素P450和FAD结合域蛋白的表达,在整个化合叶上没有显著差异。
与修正Ct值的差异相比较,接种点的表达较强,其他研究报道了在非寄主香菜中,接种了病原菌后,苯丙氨酸氨裂解酶,4-香豆酸:辅酶A连接酶,S-腺苷基-L-甲硫氨酸,苯光甲烯O-甲基转移酶和病理反应相关蛋白的mRNA,在感染组织中上调。
研究报道称,在滴菌感染拟南芥与灰霉病菌后,基因DJ1E的拟南芥启动子,在整个拟南芥叶片中显示出类似的活性,这与结果一致,在研究中,其他基因,例如F-box-like基因07g056210.2.1和细胞色素P450,在八个取样位置中的两个位置上存在差异,当接种发生在顶尖叶片时。
这意味着选择的大多数取样位置与接种点类似地进行调节,因此在受感染的叶片的健康组织中,也可以感知到灰霉病的感染,有趣的是,这两个细胞色素P450的调节并不相同,这可以通过属于蛋白质超家族的细胞色素之间,潜在不同功能来解释。
结果表明,在顶尖叶片接种时,细胞色素P450和FAD结合域蛋白的mRNA,在叶轴和化合叶的顶尖叶,主叶脉中以相同的相对表达水平表达,当感染化合叶的侧叶片时,两个细胞色素P450,以及FAD结合域蛋白在叶轴样本和感染部位上以相似的方式表达,对于24和48小时的取样时间而言如此。
考虑到修正Ct值的差异,最强的上调总是在感染点处找到,为何基因的表达在接种点上有所不同,数据无法回答这个问题,由于所有四个在感染组织中,被描述为上调的基因在健康组织中也被上调,因此可以将这些基因的组合,用于多重qPCR检测无症状叶组织中的灰霉病感染。
建立这样的检测方法还需要进行进一步的实验,使用更大数量的样本,与使用选择性培养基的传统微生物疾病检测,和分离技术相比,这种方法可以快速指示患病叶样本,例如在番茄幼苗生产过程中。
如果这种基因调控是特定于灰霉病的,并且对其他生物和非生物胁迫的影响需要进一步评估,所呈现的结果建议取样叶轴组织,因为两个细胞色素P450以及FAD结合域蛋白的基因,在叶轴样本中与感染部位类似调控,而与感染位置无关。
是否在整株植物中也适用,还需要在未来的研究中进行测试,这些基因的启动子可能在工程改造植物方面具有进一步的用途,如葡萄藤中通过基因表达的非破坏性定量所示。
«——【·结论·】——»未受感染的花轴组织中存在灰霉病相关基因的上调现象,尽管程度较低,但这些基因在未受感染的组织中也表现出一定程度的上调,这暗示着这些基因的组合,包括花轴中上调的基因和参考基因,可以在多重qPCR检测中,用于检测无症状叶组织中的灰霉病感染。
需要进行更多样本的进一步实验来确立这种检测方法,与传统的微生物疾病检测和分离技术相比,这种方法可以更快速地指示患病叶样本,例如在番茄苗的生产过程中,仍然需要进一步研究这种基因调控是否特异于灰霉病,并评估其对其他生物和非生物胁迫的潜在影响。
参考文献1.Boller T, Felix G. 2009. A renaissance of elicitors: perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by pattern-recognition receptors. Annu Rev Plant Biol. 60:379–406. [Crossref], [PubMed], [Web of Science ®], [Google Scholar]2.Craig KL, Tyers M. 1999. The F-box: a new motif for ubiquitin dependent proteolysis in cell cycle regulation and signal transduction. Prog Biophys Mol Biol. 72(3):299–328. [Crossref], [PubMed], [Web of Science ®], [Google Scholar]3.Cremer KD, Mathys J, Vos C, Froenicke L, Michelmore RW, Cammue BPA, Coninck BD. 2013. RNAseq-based transcriptome analysis of Lactuca sativa infected by the fungal necrotroph Botrytis cinerea. Plant, Cell Environ. 36(11):1992–2007. [PubMed], [Web of Science ®], [Google Scholar]4.Fraaije MW, Mattevi A. 2000. Flavoenzymes: diverse catalysts with recurrent features. Trends Biochem Sci. 25(3):126–132. [Crossref], [PubMed], [Web of Science ®], [Google Scholar]5.Lehmeyer M, Kanofsky K, Hanko EKR, Ahrendt S, Wehrs M, Machens F, Hehl R. 2016. Functional dissection of a strong and specific microbe-associated molecular pattern-responsive synthetic promoter. Plant Biotechnol J. 14(1):61–71. [Crossref], [PubMed], [Web of Science ®], [Google Scholar]
病原体杀菌剂相互作用兼容有助于减少(基因接种感染叶片病原体)
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